Інвагінація оолемми в нативних і кріоконсервованих ооцитах людини при їх заплідненні in vitro методом ICSI

Автор(и)

  • Maryna P. Petrushko Інститут проблем кріобіології та кріомедицини НАН України, м. Харків; Медичний центр «ВРТ-клініка репродуктивної медицини», м. Харків
  • Taisiia O. Yurchuk Інститут проблем кріобіології та кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Natalia O. Buderatska Інститут проблем кріобіології та кріомедицини НАН України, м. Харків; Медичний центр «ІГР», м. Київ
  • Volodymyr I. Piniaiev Інститут проблем кріобіології та кріомедицини НАН України, м. Харків; Медичний центр «ВРТ-клініка репродуктивної медицини», м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo28.03.258

Ключові слова:

кріоконсервування, вітрифікація, ооцит, оолема

Анотація

Розробка нових прогноÑтичних критеріїв оцінки Ð·Ð°Ð¿Ð»Ñ–Ð´Ð½ÐµÐ½Ð½Ñ in vitro нативних та кріоконÑервованих ооцитів Ñ” важливою Ñкладовою ÑучаÑних допоміжних репродуктивних технологій. Проведено порівнÑÐ½Ð½Ñ ÑÑ‚ÑƒÐ¿ÐµÐ½Ñ Ñ–Ð½Ð²Ð°Ð³Ñ–Ð½Ð°Ñ†Ñ–Ñ— оолемми за нтрацитоплазматичного Ð²Ð²ÐµÐ´ÐµÐ½Ð½Ñ Ñперміїв в нативні та кріоконÑервовані ооцити. Розроблено клаÑифікацію Ñтану тургору гамети від ÑÑ‚ÑƒÐ¿ÐµÐ½Ñ Ñ–Ð½Ð²Ð°Ð³Ñ–Ð½Ð°Ñ†Ñ–Ñ— оолеми при інтрацитоплазматичному введенні Ñперміїв. Така поведінка мембрани ооцита Ñ” прогноÑтичною характериÑтикою ÑƒÑ‚Ð²Ð¾Ñ€ÐµÐ½Ð½Ñ Ð·Ð¸Ð³Ð¾Ñ‚. Ооцити з нормальним тургором характеризувалиÑÑ Ð²Ð¸Ñокою чаÑтотою Ð·Ð°Ð¿Ð»Ñ–Ð´Ð½ÐµÐ½Ð½Ñ â€’ більше 80%. Моментальний прокол оолеми під Ñ‡Ð°Ñ Ð¼Ñ–ÐºÑ€Ð¾Ð¼Ð°Ð½Ñ–Ð¿ÑƒÐ»Ñції Ñвідчив про Ñтруктурно-функціональні пошкодженнÑÑ… мембрани та призводив до дегенерації ооцитів. ПіÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñтандартним методом змінювалоÑÑ ÑÐ¿Ñ–Ð²Ð²Ñ–Ð´Ð½Ð¾ÑˆÐµÐ½Ð½Ñ Ñ€Ñ–Ð·Ð½Ð¸Ñ… типів інвагінації оолеми. ВідноÑна кількіÑÑ‚ÑŒ клітин із нормальним тургором знижувалаÑÑ Ð´Ð¾ 54% за рахунок Ð·Ð±Ñ–Ð»ÑŒÑˆÐµÐ½Ð½Ñ Ð¾Ð¾Ñ†Ð¸Ñ‚Ñ–Ð² із підвищеною пружніÑÑ‚ÑŽ мембрани. Чоти-риÑтупеневий метод Ð²Ð¸Ð´Ð°Ð»ÐµÐ½Ð½Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾Ð·Ð°Ñ…Ð¸Ñного Ñередовища піÑÐ»Ñ Ð·Ð°Ð¼Ð¾Ñ€Ð¾Ð¶ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ-відігріву ооцитів більш ефективний Ð´Ð»Ñ Ð·Ð±ÐµÑ€ÐµÐ¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ð³Ð°Ð¼ÐµÑ‚ із нормальним тургором, на відміну від Ñтандартного двоÑтупеневого.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2018; 28(3): XXX–XXX

Біографії авторів

Maryna P. Petrushko, Інститут проблем кріобіології та кріомедицини НАН України, м. Харків; Медичний центр «ВРТ-клініка репродуктивної медицини», м. Харків

Відділ кріобіології ÑиÑтеми репродукції

Taisiia O. Yurchuk, Інститут проблем кріобіології та кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіології ÑиÑтеми репродукції

Natalia O. Buderatska, Інститут проблем кріобіології та кріомедицини НАН України, м. Харків; Медичний центр «ІГР», м. Київ

Відділ кріобіології ÑиÑтеми репродукції

Volodymyr I. Piniaiev, Інститут проблем кріобіології та кріомедицини НАН України, м. Харків; Медичний центр «ВРТ-клініка репродуктивної медицини», м. Харків

Відділ кріобіології ÑиÑтеми репродукції

Посилання

Buderatska NO, Gontar YV, Il'in II, et al. [Comparative characteristics of morphological feature and localization of meiotic spindle in human oocytes before and after cryoconservation]. Ukr Z Med Bìol Sportu. 2017; 1: 151‒7. Ukrainian.

Buderatska NO, Petrushko MP. [Variability of morphological parameters as a prognostic criterion of human oocyte cryopreservation]. Morphologia. 2017; 10 (4): 18‒22. Ukrainian. CrossRef

Chasombat J, Nagai T, Parnpai R, Vongpralub T. Pretreatment of in vitro matured bovine oocytes with docetaxel before vitrification: effects on cytoskeleton integrity and developmental ability after warming. Cryobiology. 2015;71(2):216‒23. CrossRef PubMed

Choi JK, Yue T, Huang H, et al. The crucial role of zona pellucida in cryopreservation of oocytes by vitrification. Cryobiology. 2015; 71(2):350‒5. CrossRef PubMed

Danfourab M, Elmahaishi M. Human oocyte oolemma characteristic is positively related to embryo developmental competence after ICSI procedure. Middle East Fertil Soc J. 2010; 15(4): 269‒73. CrossRef

Edashige K. Permeability of the plasma membrane to water and cryoprotectants in mammalian oocytes and embryos: Its relevance to vitrification. Reprod Med Biol. 2017; 16(1): 36‒9. CrossRef PubMed

Halliday J. Outcomes for offspring of men having ICSI for male factor infertility. Asian J Androl. 2012; 14(1): 116–20. CrossRef PubMed

Jung YJ, Cheon YP. Improvement of the vitrification method suppressing the disturbance of meiotic spindle and chromosome systems in mature oocytes. Dev Reprod. 2014; 18(2):117‒25. CrossRef PubMed

Khalilian M, Valojerdi MR, Navidbakhsh M, et al. Estimating zona pellucida hardness under microinjection to assess oocyte/embryo quality: Analytical and experimental studies. Adv Biosci Biotechnol. 2013; 4(5): 679‒688. CrossRef

Kuwayama M, Vajta G, Kato O, Leibo SP. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reprod Biomed Online. 2005;11(3):300–8. CrossRef

Liu L, Cai J, Li P, Jiang X, Ren J. Clinical outcome of cycles with oocyte degeneration after intracytoplasmic sperm injection. Syst Biol Reprod Med. 2017; 63(2):113‒19. CrossRef PubMed

Manna C, Rienzi L, Greco E, et al. Zona pellucida solubility and cortical granule complements in human oocytes following assisted reproductive techniques. Zygote. 2001; 9(3):201‒10. CrossRef PubMed

Mullen SF, Li M, Li Y, et al. Human oocyte vitrification: the permeability of metaphase II oocytes to water and ethylene glycol and the appliance toward vitrification. Fertil Steril. 2008; 89(6):1812‒25. CrossRef PubMed

Nagy ZP, Varghese AC, Agarwal A, editors. Practical manual of in vitro fertilization. NY: Springer-Verlag. 703 p. CrossRef

Ola B, Afnan M, Sharif K, et al. Should ICSI be the treatment of choice for all cases of in‒vitro conception? Considerations of fertilization and embryo development, cost effectiveness and safety. Hum Reprod. 2001;16(12):2485‒90. CrossRef PubMed

Palermo GD, Alikani M, Bertoli M, et al. Oolemma characteristics in relation to survival and fertilization patterns of oocytes treated by introplasmic sperm injection. Hum Reprod. 1996;11:172–6. CrossRef

Palmerini MG, Antinori M, Maione M, et al. Ultrastructure of immature and mature human oocytes after cryotop vitrification. J Reprod Dev. 2014; 60(6):411‒20. CrossRef PubMed

Petrushko MP. [Current state of the problem of cryopreservation of reproductive cells and human embryos]. Visnyk Nac Acad Nauk Ukr. 2017; (7): 44‒52. Ukrainian.

Petrushko MP, Pinaev VI, Podufaly VV, et al. [Pregnancy after transfer of the embryo obtained by fertilization of oocyte devoid of Zona pellucida and cryopreserved epididymalsperm]. Problemy Reproduktsii. 2013; (2): 63–5. Russian.

Porcu E, Fabbri R, Damiano G, et al. Clinical experience and applications of oocyte cryopreservation. Mol Cell Endocrinol. 2000; 169(1‒2):33‒7. CrossRef

Rubino P, Vigano P, Luddi A, et al. The ICSI procedure from past to future: a systematic review of the more controversial aspects. Hum Reprod Update. 2016; 22(2):194‒227. PubMed

Smolyaninova EI, Shigimaga VA, Strykha OA, et al. Influence of cryopreservation stages by vitrification in ethylene glycol-saccharose medium on electrical conductivity of mouse 2-cell oocytes. Probl Cryobiol Cryomed. 2013; 23(3), 228‒37. Full Text

Yanagida K, Katayose H, Suzuki K, et al. Flexibility of oolemma is an important factor for oocyte survival after ICSI. J Mamm Ova Res. 2001;18:93–98. CrossRef

Yavas Y, Roberge S, Khamsi F, et al. Performing ICSI using and injection pipette with the smallest possible inner diameter and a long taper increases normal fertilization rate, decreases incidence of degeneration and tripronuclear zygotes, and enhances embryo development. J Assist Reprod Genet. 2001;18(8): 426‒35. CrossRef PubMed

Downloads

Опубліковано

2018-09-27

Як цитувати

Petrushko, M. P., Yurchuk, T. O., Buderatska, N. O., & Piniaiev, V. I. (2018). Інвагінація оолемми в нативних Ñ– кріоконсервованих ооцитах людини при Ñ—Ñ… заплідненні in vitro методом ICSI. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 28(3), 258–265. https://doi.org/10.15407/cryo28.03.258

Номер

Розділ

Кріомедицина, клінічна та експериментальна трансплантологія