Криозащитная эффективность сред, содержащих комбинации оксиэтилированного метилцеллозольва и диметилацетамида при замораживании-отогреве эритроцитов человека

Автор(и)

  • Aleksandra V. Nikolenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Olga V. Vyazovska Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Valentina V. Chekanova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

Ключові слова:

еритроцити, кріоконсервування, багатокомпонентні кріозахисні середовища, оксиетильований метилцелозольв, диметилацетамід

Анотація

ПерÑпективним напрÑмком при розробці кріозахиÑних Ñередовищ Ð´Ð»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐµÑ€Ð¸Ñ‚Ñ€Ð¾Ñ†Ð¸Ñ‚Ñ–Ð² Ñ” викориÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ Ñуміші кріопротекторів, Ñкі належать до різних клаÑів хімічних Ñполук. У цьому доÑлідженні оцінювали кріозахиÑну активніÑÑ‚ÑŒ комбінацій предÑтавника клаÑу поліолів – непроникаючого кріопротектора окÑиетильованого метилцелозольву зі Ñтупенем полімерізації n = 33–35 (ОЕМЦn=33–35) Ñ– клаÑу амидів – проникаючого кріопротектора диметилацетаміду (ДМÐц). Комбінації ОЕМЦn=33–35 Ñ– ДМÐц у вагових ÑпіввідношеннÑÑ… 1:1 (10 Ñ– 10%); 2:1 (10 Ñ– 5%); 3:1 (15 Ñ– 5%); 4:1 (20 Ñ– 5%); 5:1 (25 Ñ– 5%) порівнювали з 20 и 30%-ми розчинами ОЕМЦn=33–35. Розчини додавали до еритромаÑи в Ñпіввідношенні 1:1 (об’єм/об’єм) при температурі 20...22°С, клітинні ÑуÑпензії заморожували шлÑхом Ð·Ð°Ð½ÑƒÑ€ÐµÐ½Ð½Ñ Ð² рідкий азот. Ð’Ñтановлено, що Ð²ÐºÐ»ÑŽÑ‡ÐµÐ½Ð½Ñ Ð”ÐœÐц у кріозахиÑні Ñередовища на оÑнові ОЕМЦn=33–35 підвищувало оÑмотичну ÑтійкіÑÑ‚ÑŒ еритроцитів піÑÐ»Ñ Ð·Ð°Ð¼Ð¾Ñ€Ð¾Ð¶ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ-відігріву. ВикориÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ€Ð¾Ð·Ñ‡Ð¸Ð½Ñ–Ð² кріопротекторів ОЕМЦn=33–35 Ñ– ДМÐц у Ñпіввідношенні 1:1 (10 Ñ– 10%) та 3:1 (15 Ñ– 5%) забезпечувало виÑоку збереженіÑÑ‚ÑŒ еритроцитів піÑÐ»Ñ Ð·Ð°Ð¼Ð¾Ñ€Ð¾Ð¶ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ-відігріву. Ð’Ñтановлено корелÑційний зв’Ñзок оÑмотичної крихкоÑÑ‚Ñ– еритроцитів з показниками внутрішньоклітинного вміÑту калію та натрію піÑÐ»Ñ Ð·Ð°Ð¼Ð¾Ñ€Ð¾Ð¶ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ-відігріву та гематокриту на етапі екÑпозиції з кріозахиÑними Ñередовищами.

Біографії авторів

Aleksandra V. Nikolenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріопротекторів

Olga V. Vyazovska, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріопротекторів

Valentina V. Chekanova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріопротекторів

Посилання

Babijchuk L.A., Zemlyanskikh N.G. Optimization and advantages of washing-out method for erythrocytes cryopreservation with PEO-1500. Problems of Cryobiology 2001; (1): 35–41.

Belous A.M., Grischenko V.I. Cryobiology. Kiev: Naukova Dumka, 1994.

Bidnyy S.Yu, Averyanov M.V. Serebryakov V.G. et al. Phase transformations in dimethyl acetamide water system. In: Physicochemical properties and biological effect of cryoprotectants: Collection of scientific papers. Kharkov, 1990. – P. 5–8.

Bogdanchikova O.A., Kireev V.A., Khodko A.T., Kompaniets A.M. Platelet cryopreservation. 2. Efficiency of cryopreservatives based on cryoprotectant combinations under different freezing regimens. Problems of Cryobiology 2010; 20(4): 443–451.

Gulevsky A.K., Bondarenko V.A., Belous A.M. Barrier properties of biomembranes at low temperatures. Kiev: Naukova Dumka, 1988.

Zinchenko A.V., Krasnikova A.O., Musatova I.B. et al. Phase behaviour of hydrooxyethylated methyl cellosolve system with polymerization degree of n=33–35 below 273 K. In: Proceeding of the 5th Ukrainian Biophysical Society Meeting. – Lutsk, 2011. – P. 152.

Kompaniets A.M., Nikolenko A.V., Chekanova V.V., Trots Yu.P. Cryopreservation of erythrocytes under oligomer of oxyethylated glycerol (n = 25). Problems of Cryobiology 2005; 15 (3): 561–565.

Linnik T.P. Amides of aliphatic acids are effective cryoprotectants. II. Cryoprotective properties of compounds of amides series. Problems of Cryobiology 1999; (2): 22–31.

Linnik T.P., Martynyuk I.N., Gaviley O.V., Beletsky E.M. Cytotoxic effect of diols, amides and their mixtures on fowl and turkey sperm prior to freezing. Problems of Cryobiology 2009; 19 (4): 383–394.

Loevsky M.M., Vorotilin A.M., Gulevsky A.K., Belous A.M. Dynamics of content of cations and phosphoorganic compounds in erythrocytes after low-temperature preservation (–196°C) under protection of 1,2-propane diol and glycerol. Bull Eksper Biol 1982; 94 (9): 95–97.

Menshikov V.V. Laboratory methods of research in clinic: Methods of hematological studies. Moscow: Meditsyna, 1987.

Nikolenko A.V., Vyazovskaya O.V. Studying survival of erythro-cytes depending on composition of cryoprotective media based on non-penetrating cryoprotectant oxyethylated methyl cellosolve. Visnyk Kharkivskogo Natsionalnogo Universytetu Imeni V.N. Karazina. Series: Biologiya 2011; 947 (13): 152–158.

Novikov A.N., Kuleshova L.G., Linnik T.P. Mechanisms of growth of ice crystals in complex biology systems. Biofizika 1991; 36 (1): 122–127.

Pushkar N.S., Belous A.M. Introduction into cryobiology. Kiev: Naukova Dumka, 1975.

Ramazanov V.V. Cryoprotective efficiency of medium combining non-penetrating and penetrating cryoprotectants when freezing erythrocyte suspensions of various volumes. Problems of Cryobiology and Cryomedicine 2013; 23 (2): 124–134.

Pat.1622995 of USSR, IPC A61N1/02. Cryoprotectant for human erythrocytes / L.P. Bredikhina, O.V. Lipina, L.A. Khanina et al.; N4489413/30-14; Filed 03.10.1988; Publ. 1991; Bull. 1.

Pat. 2326532 of Russian Federation, IPC A01N1/02. Cryopreservation method of platelets / A.A. Kostyaev, F.S. Sherstnev, S.V. Utemov et al.; Filed 29.08.2006; Publ. 20.06.2008; Bull. 17.

Crawford A., Harris H. Balancing act: Na+ sodium K+ potassium. Nursing 2011; 41 (7): 44–50.

Edwards S. Regulation of water, sodium and potassium: implications for practice. Nursing Standard 2001; 15(22): 36–42.

Glafke C., Akhoondi M., Oldenhof H. et al. Cryopreservation of platelets using trehalose: the role of membrane phase behavior during freezing. Biotechnol Prog 2012; 28 (5): 1347–1354.

Growe H., Oliver. A.E., Yoekstra F.A., Growe L.M. Stabilization of dry membrane by mixtures of hydroxyethyl starch and glucose: the role of vitrification. Cryobiology 1997; 35 (1): 20–30.

Nikolenko A.V., Chekanova V.V., Schetinsky M.I., Vyazovska O.V. Relation between cryoprotective and physico-chemical properties of oxyethylated methyl cellosolve-based media. Cryoletters 2013; 34 (5): 527–534.

Petrenko Y.A., Jones D.R.E., Petrenko A.Y. Cryopreservation of human fetal liver hematopoietic stem / progenitor cells using sucrose as an additive to the cryoprotective medium. Cryobiology 2008; 57 (3): 195–200.

Quan G.B., Han Y., Liu M.X., Gao F. Effects of pre-freeze incubation of human red blood cells with various sugars on postthaw recovery when using a dextran-rapid cooling protocol. Cryobiology 2009; 59 (3): 258–267.

Quan G.B., Han Y., Liu M.X. et al. Addition of oligosaccharide decreases the freezing lesions on human red blood cell membrane in the presence of dextran and glucose. Cryobiology 2011; 62 (2): 135–144.

Savitz D., Sidel V.W., Solomon A.K. Osmotic properties of human red cells. J Gen Physiol 1964; 48(1): 79–94.

Valeri C.R. Blood banking and the use of frozen blood products. – Cleveland: CRC Press, 1976.

Zhivotova E.N., Zinchenko A.V., Kuleshova L.G., Chekanova V.V., Kompaniets A.M. Physical states of aqueous solutions of oxyethylated glycerol with polymerization degree of n = 30 at temperatures lower than 283 K. CryoLetters 2007; 28 (4): 261–270.

Опубліковано

2013-12-30

Як цитувати

Nikolenko, A. V., Vyazovska, O. V., & Chekanova, V. V. (2013). Криозащитная эффективность сред, содержащих комбинации оксиэтилированного метилцеллозольва и диметилацетамида при замораживании-отогреве эритроцитов человека. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 23(4), 297–308. вилучено із http://www.cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/315

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія