Функция трансплантатов овариальной ткани после гипотермического хранения: значение состава среды инкубации

Авторы

  • Viktoria V. Kiroshka Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Kateryna O. Borodai Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Iryna A. Trutaieva Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Nana Ðœ. Pasieshvili КПОЗ «Харьковский обласной клинический перинатальный центр», г. Харьков
  • Tatyana P. Bondarenko Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo29.01.019

Ключевые слова:

гипотермическое хранение, морфологическая структура, фолликулы, половые гормоны, маннитол, овариальная ткань

Аннотация

Ð’ работе проведен Ñравнительный анализ морфологичеÑкой Ñтруктуры, Ñндокринной функции и фол-ликулогенза транÑплантатов половозрелой и неонатальной овариальной ткани ÐºÑ€Ñ‹Ñ Ð¿Ð¾Ñле гипотермичеÑкого Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ (ГХ) в Ñредах различного ÑоÑтава. Ð”Ð»Ñ Ð²Ñ‹Ð¿Ð¾Ð»Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ñ€Ð°Ð±Ð¾Ñ‚Ñ‹ были иÑпользованы Ñледующие методы: гетеротопичеÑÐºÐ°Ñ Ñ‚Ñ€Ð°Ð½ÑÐ¿Ð»Ð°Ð½Ñ‚Ð°Ñ†Ð¸Ñ (иÑÑледование Ñтруктуры и функции овариальной ткани поÑле ГХ); иммуно-ферментный анализ (определение концентрации половых гормонов в плазме); морфологичеÑкий (оценка целоÑÑ‚-ноÑти Ñтруктуры транÑплантатов ткани поÑле ГХ). ЭкÑпериментально доказано, что определÑющим фактором фолликулÑрного Ñ€Ð°Ð·Ð²Ð¸Ñ‚Ð¸Ñ Ð¸ Ñндокринной функции транÑплантатов овариальной ткани различных Ñтадий гиÑтогенеза поÑле ГХ ÑвлÑетÑÑ ÑоÑтав Ñреды инкубации. УÑтановлено, что поÑле Ð¿Ñ€Ð¸Ð¼ÐµÐ½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ñ„Ð¾Ñфатно-Ñолевого буфера Ð´Ð»Ñ Ð“Ð¥ значимо уменьшалÑÑ Ñ„Ð¾Ð»Ð»Ð¸ÐºÑƒÐ»Ñрный пул и ÑнижалаÑÑŒ ÑÑ‚ÐµÑ€Ð¾Ð¸Ð´Ð¾Ð³ÐµÐ½Ð½Ð°Ñ Ñ„ÑƒÐ½ÐºÑ†Ð¸Ñ Ñ‚Ñ€Ð°Ð½Ñплантатов как половозрелой, так и неонатальной овариальной ткани. Показано, что в результате гипотермичеÑкого Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð² Ñреде, Ñодержащей маннитол, количеÑтво фолликулов (разной Ñтепени зрелоÑти и желтые тела) и ÑÐ½Ð´Ð¾ÐºÑ€Ð¸Ð½Ð½Ð°Ñ Ñ„ÑƒÐ½ÐºÑ†Ð¸Ñ Ð¿Ð¾Ñле транÑплантации овариальной ткани были Ñравнимы Ñ Ñ‚Ð°ÐºÐ¾Ð²Ñ‹Ð¼Ð¸ поÑле транÑплантации Ñвежевыделенной ткани.

Probl Cryobiol Cryomed 2019; 29(1): XXX–XXX

 

Биографии авторов

Viktoria V. Kiroshka, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криоÑндокринологии

Kateryna O. Borodai, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криоÑндокринологии

Iryna A. Trutaieva, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криоÑндокринологии

Tatyana P. Bondarenko, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криоÑндокринологии

Библиографические ссылки

Abir R, Biron-Shental T, Orvieto R, et al. Transplantation of frozen–thawed late-gestational-age human fetal ovaries into immunodeficient mice. Fertility and Sterility. 2009; 92(2): 770–7. CrossRef

Andrews RJ, Bringas JR, Muto RP. Effects of mannitol on cerebral blood flow, blood pressure, blood viscosity, hematocrit, sodium, and potassium. Surg Neurol. 1993; 39(3): 218–22. CrossRef

Carvalho FCA, Lucci CM, Silva JRV, et al. Effect of BraunCollins and saline solutions at different temperatures and incubations times on the quality of goat preantral follicles preserved in situ. Anim Reprod Sci. 2000; 66(3): 195–208.

Gastal GDA, Alves BG, Alves KA, et al. Ovarian fragment sizes affect viability and morphology of preantral follicles during storage at 4°C. Reprod. 2017; 153(5): 577–87. CrossRef

Giwa S, Lewis JK, Alvarez L, et al. The promise of organ and tissue preservation to transform medicine. Nat Biotechnol. 2017; 35(6):530–42. CrossRef

Gougeon A. Dynamics of follicular growth in the human: a model from preliminary results. Hum Reprod. 1986; 1(2): 81–7. CrossRef

Guiberta EE, Petrenko AY, Balaban CL, et al. Organ preservation: current concepts and new strategies for the next decade. Transfus Med Hemother. 2011; 38(2): 125–42. CrossRef

Hirshfield AN, DeSanti AM. Patterns of ovarian cell proliferation in rats during the embryonic period and the first three weeks postpartum. Biol Reprod. 1995; 53(5): 1208–21. CrossRef

Israely T, Nevo N, Harmelin A, et al. Reducing ischaemic damage in rodent ovarian xenografts transplanted into granulation tissue. Human Reproduction. 2006; 21(6): 1368–79. CrossRef

Jensen AK, Macklon KT, Fedder J, et al. 86 successful births and 9 ongoing pregnancies worldwide in women transplanted with frozen-thawed ovarian tissue: focus on birth and perinatal outcome in 40 of these children. J Assist Reprod Genet. 2017; 34(3): 325-36. CrossRef

Karibe H, Zarow GJ, Weinstein PR. Use of mild intraischemic hypothermia versus mannitol to reduce infarct size after temporary middle cerebral arteryocclusion in rats. J Neurosurg. 1995; 83(1): 93–8. CrossRef

Kiroshka VV, Medinets EA, Tischenko YuO, Bondarenko TP. Dynamics of morphological change in neonatal ovarian tissue during hypothermic storage depending on composition of incubation medium. Probl Cryobiol Cryomed. 2012; 22(1): 61–70.

Korzhevsky DE, Gilyarov AV. [Fundamentals of histological techniques]. St. Petersburg: SpetsLit; 2010. 95 p. Russian.

Lucci C, Kacinskis M, Rumpf R. Effects of lowered temperatures and media on short-term preservation of zebu (Bosindicus) preantral ovarian follicles. Theriogenology. 2004; 61(2–3): 461–72. CrossRef

Magovern GJ, Belling SF, Casale AS, et al. The mechanism of mannitol in reducing ischemic injury: hyperosmolarity or hydroxyl scavenger. Circulation. 1984; 70(3 Pt 2): 191–5.

Matson BA, Albertini DF. Oogenesis: chromatin and microtubule dynamics during meiotic prophase. Mol Reprod Dev. 1990; 25(4): 374–83. CrossRef

Oredsson S, Plate G, Qvarfordt P. The effect of mannitol on reperfusion injury and postischaemic compartment pressure in skeletal muscle. Eur J Vasc Surg. 1994; 8(3): 326–31. CrossRef

Paczynski RP, He YY, Diringer MN, Hsu CY. Multiple-dose mannitol reduces brain water content in a rat model of cortical infarction. Stroke. 1997; 28(7): 1437–43. CrossRef

Pyatikop VA, Karamyshev VD, Shevereva VM, Dvortsevoy VK. Histological analysis of changes in brain tissues of rats with experimental Parkinson disease prior to and after transplantation of cryopreserved embryonic nerve cells. Problems of Cryobiology. 2006; 16(2): 211–6.

Pyatikop VA, Schegelskaya EA, Mikulinsky YuE, et al. Restoration of structural and functional parameters in rats with cryogenic brain injury after transplantation of bone marrow stromal cells induced into neuroblasts. Problems of Cryobiology. 2005; 15(3): 449–51.

Sağsöz N, Kisa U, Apan A. Ischaemia-reperfusion injury of rat ovary and the effect of vitamin C, mannitol and verapamil. Hum Reprod. 2002; 17(11): 2972–6. CrossRef

Salama M, Isachenko V, Isachenko E, et al. Advances in fertility preservation of female patients with hematological malignancies. Expert Rev Hematol. 2017; 10(11): 951–60. CrossRef

Snow M, Cleary M, Cox S-Let, al. Comparison of the effects of in vitro and in situ storage on the viability of mouse ovarian tissue collected after death. Reprod Fertil Dev. 2001; 13(5-6): 389–94. CrossRef

'THart NA, Leuvenink HGD, Ploeg RJ. New solutions in organ preservation. Transplantation Reviews. 2002; 16(3): 131–41. CrossRef

Wright CS, Becker DL, Lin JS, Warner AE, Hadry K. Stage-specific and differential expression of gap junctions in the mouse ovary: connexin-specific roles in follicular regulation. Reprod. 2001; 121(1): 77–88. CrossRef

Загрузки

Опубликован

2019-03-25

Как цитировать

Kiroshka, V. V., Borodai, K. O., Trutaieva, I. A., Pasieshvili, N. Ðœ., & Bondarenko, T. P. (2019). Функция трансплантатов овариальной ткани после гипотермического хранения: значение состава среды инкубации. Проблемы криобиологии и криомедицины, 29(1), 19–27. https://doi.org/10.15407/cryo29.01.019

Выпуск

Раздел

Теоретическая и экспериментальная криобиология