Функція трансплантатів оваріальної тканини після гіпотермічного зберігання: значення складу середовища інкубації

Автор(и)

  • Viktoria V. Kiroshka Інститут проблем кріобіології Ñ– кріоме-дицини НАН України, м. Харків
  • Kateryna O. Borodai Інститут проблем кріобіології Ñ– кріоме-дицини НАН України, м. Харків
  • Iryna A. Trutaieva Інститут проблем кріобіології Ñ– кріоме-дицини НАН України, м. Харків
  • Nana Ðœ. Pasieshvili КЗОЗ «Харківський обласний клінічний перинатальний центр», м. Харків
  • Tatyana P. Bondarenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріоме-дицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo29.01.019

Ключові слова:

гіпотермічне зберігання, морфологічна структура, фолікули, статеві гормони, манітол, оваріальна тканина

Анотація

У роботі проведено порівнÑльний аналіз морфологічнної Ñтруктури, ендокринної функції та фолікулогенезу транÑплантатів Ñтатевозрілої та неонатальної оваріальної тканини щурів піÑÐ»Ñ Ð³Ñ–Ð¿Ð¾Ñ‚ÐµÑ€Ð¼Ñ–Ñ‡Ð½Ð¾Ð³Ð¾ Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ (ГЗ) у Ñередовищах різного Ñкладу. Ð”Ð»Ñ Ð²Ð¸ÐºÐ¾Ð½Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ€Ð¾Ð±Ð¾Ñ‚Ð¸ були викориÑтані наÑтупні методи: гетеротопічна транÑÐ¿Ð»Ð°Ð½Ñ‚Ð°Ñ†Ñ–Ñ (доÑÐ»Ñ–Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ñтруктури Ñ– функції оваріальної тканини піÑÐ»Ñ Ð“Ð—); імуноферментний аналіз (Ð²Ð¸Ð·Ð½Ð°Ñ‡ÐµÐ½Ð½Ñ ÐºÐ¾Ð½Ñ†ÐµÐ½Ñ‚Ñ€Ð°Ñ†Ñ–Ñ— Ñтатевих гормонів у плазмі); морфологічний (оцінка ціліÑноÑÑ‚Ñ– Ñтруктури транÑплантатів тканини піÑÐ»Ñ Ð“Ð—). ЕкÑпериментально доведено, що оÑновним фактором фолікулÑрного розвитку та ендокринної функції транÑплантатів оваріальної тканини різних Ñтадій гіÑтогенезу піÑÐ»Ñ Ð“Ð— Ñ” Ñклад Ñередовища інкубації. Ð’Ñтановлено, що піÑÐ»Ñ Ð·Ð°ÑтоÑÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ„Ð¾Ñфатно-Ñольового буфера Ð´Ð»Ñ Ð“Ð— значуще зменшувавÑÑ Ñ„Ð¾Ð»Ñ–ÐºÑƒÐ»Ñрний пул Ñ– знижувалаÑÑ Ñтероїдогенна Ñ„ÑƒÐ½ÐºÑ†Ñ–Ñ Ñ‚Ñ€Ð°Ð½Ñплантатів Ñк Ñтатевозрілої, так Ñ– неонатальної оваріальної тканини. Показано, що під Ñ‡Ð°Ñ Ð³Ñ–Ð¿Ð¾Ñ‚ÐµÑ€Ð¼Ñ–Ñ‡Ð½Ð¾Ð³Ð¾ Ð·Ð±ÐµÑ€Ñ–Ð³Ð°Ð½Ð½Ñ Ñƒ Ñередовищі, Ñке міÑтило манітол, кількіÑÑ‚ÑŒ фолікулів (різного Ñтупеню розвитку та жовті тіла) Ñ– ендокринна Ñ„ÑƒÐ½ÐºÑ†Ñ–Ñ Ð¿Ñ–ÑÐ»Ñ Ñ‚Ñ€Ð°Ð½Ñплантації оваріальної тканини були порівнÑні з такими піÑÐ»Ñ Ñ‚Ñ€Ð°Ð½Ñплантації Ñвіжовиділеної тканини.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2019; 29(1): XXX–XXX

Біографії авторів

Viktoria V. Kiroshka, Інститут проблем кріобіології і кріоме-дицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Kateryna O. Borodai, Інститут проблем кріобіології і кріоме-дицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Iryna A. Trutaieva, Інститут проблем кріобіології і кріоме-дицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Tatyana P. Bondarenko, Інститут проблем кріобіології і кріоме-дицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Посилання

Abir R, Biron-Shental T, Orvieto R, et al. Transplantation of frozen–thawed late-gestational-age human fetal ovaries into immunodeficient mice. Fertility and Sterility. 2009; 92(2): 770–7. CrossRef

Andrews RJ, Bringas JR, Muto RP. Effects of mannitol on cerebral blood flow, blood pressure, blood viscosity, hematocrit, sodium, and potassium. Surg Neurol. 1993; 39(3): 218–22. CrossRef

Carvalho FCA, Lucci CM, Silva JRV, et al. Effect of BraunCollins and saline solutions at different temperatures and incubations times on the quality of goat preantral follicles preserved in situ. Anim Reprod Sci. 2000; 66(3): 195–208.

Gastal GDA, Alves BG, Alves KA, et al. Ovarian fragment sizes affect viability and morphology of preantral follicles during storage at 4°C. Reprod. 2017; 153(5): 577–87. CrossRef

Giwa S, Lewis JK, Alvarez L, et al. The promise of organ and tissue preservation to transform medicine. Nat Biotechnol. 2017; 35(6):530–42. CrossRef

Gougeon A. Dynamics of follicular growth in the human: a model from preliminary results. Hum Reprod. 1986; 1(2): 81–7. CrossRef

Guiberta EE, Petrenko AY, Balaban CL, et al. Organ preservation: current concepts and new strategies for the next decade. Transfus Med Hemother. 2011; 38(2): 125–42. CrossRef

Hirshfield AN, DeSanti AM. Patterns of ovarian cell proliferation in rats during the embryonic period and the first three weeks postpartum. Biol Reprod. 1995; 53(5): 1208–21. CrossRef

Israely T, Nevo N, Harmelin A, et al. Reducing ischaemic damage in rodent ovarian xenografts transplanted into granulation tissue. Human Reproduction. 2006; 21(6): 1368–79. CrossRef

Jensen AK, Macklon KT, Fedder J, et al. 86 successful births and 9 ongoing pregnancies worldwide in women transplanted with frozen-thawed ovarian tissue: focus on birth and perinatal outcome in 40 of these children. J Assist Reprod Genet. 2017; 34(3): 325-36. CrossRef

Karibe H, Zarow GJ, Weinstein PR. Use of mild intraischemic hypothermia versus mannitol to reduce infarct size after temporary middle cerebral arteryocclusion in rats. J Neurosurg. 1995; 83(1): 93–8. CrossRef

Kiroshka VV, Medinets EA, Tischenko YuO, Bondarenko TP. Dynamics of morphological change in neonatal ovarian tissue during hypothermic storage depending on composition of incubation medium. Probl Cryobiol Cryomed. 2012; 22(1): 61–70.

Korzhevsky DE, Gilyarov AV. [Fundamentals of histological techniques]. St. Petersburg: SpetsLit; 2010. 95 p. Russian.

Lucci C, Kacinskis M, Rumpf R. Effects of lowered temperatures and media on short-term preservation of zebu (Bosindicus) preantral ovarian follicles. Theriogenology. 2004; 61(2–3): 461–72. CrossRef

Magovern GJ, Belling SF, Casale AS, et al. The mechanism of mannitol in reducing ischemic injury: hyperosmolarity or hydroxyl scavenger. Circulation. 1984; 70(3 Pt 2): 191–5.

Matson BA, Albertini DF. Oogenesis: chromatin and microtubule dynamics during meiotic prophase. Mol Reprod Dev. 1990; 25(4): 374–83. CrossRef

Oredsson S, Plate G, Qvarfordt P. The effect of mannitol on reperfusion injury and postischaemic compartment pressure in skeletal muscle. Eur J Vasc Surg. 1994; 8(3): 326–31. CrossRef

Paczynski RP, He YY, Diringer MN, Hsu CY. Multiple-dose mannitol reduces brain water content in a rat model of cortical infarction. Stroke. 1997; 28(7): 1437–43. CrossRef

Pyatikop VA, Karamyshev VD, Shevereva VM, Dvortsevoy VK. Histological analysis of changes in brain tissues of rats with experimental Parkinson disease prior to and after transplantation of cryopreserved embryonic nerve cells. Problems of Cryobiology. 2006; 16(2): 211–6.

Pyatikop VA, Schegelskaya EA, Mikulinsky YuE, et al. Restoration of structural and functional parameters in rats with cryogenic brain injury after transplantation of bone marrow stromal cells induced into neuroblasts. Problems of Cryobiology. 2005; 15(3): 449–51.

Sağsöz N, Kisa U, Apan A. Ischaemia-reperfusion injury of rat ovary and the effect of vitamin C, mannitol and verapamil. Hum Reprod. 2002; 17(11): 2972–6. CrossRef

Salama M, Isachenko V, Isachenko E, et al. Advances in fertility preservation of female patients with hematological malignancies. Expert Rev Hematol. 2017; 10(11): 951–60. CrossRef

Snow M, Cleary M, Cox S-Let, al. Comparison of the effects of in vitro and in situ storage on the viability of mouse ovarian tissue collected after death. Reprod Fertil Dev. 2001; 13(5-6): 389–94. CrossRef

'THart NA, Leuvenink HGD, Ploeg RJ. New solutions in organ preservation. Transplantation Reviews. 2002; 16(3): 131–41. CrossRef

Wright CS, Becker DL, Lin JS, Warner AE, Hadry K. Stage-specific and differential expression of gap junctions in the mouse ovary: connexin-specific roles in follicular regulation. Reprod. 2001; 121(1): 77–88. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2019-03-25

Як цитувати

Kiroshka, V. V., Borodai, K. O., Trutaieva, I. A., Pasieshvili, N. Ðœ., & Bondarenko, T. P. (2019). Функція трансплантатів оваріальної тканини після гіпотермічного зберігання: значення складу середовища інкубації. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 29(1), 19–27. https://doi.org/10.15407/cryo29.01.019

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія